Полный справочник медицинской аппаратуры

Коллектив авторов

Конструкция блока проб (образцов) чаще всего аналогична конструкции реагентного блока, с той лишь разницей, что основным преимуществом карусели является не только возможность использования первичных пробирок, но и возможность установки дополнительных калибраторов и/или образцов в процессе работы прибора. Кроме того, в большинстве приборов с каруселью проб не существует жесткой привязки калибраторов к определенным гнездам, а сами пробы хранятся при комнатной температуре, без дополнительного подогрева.

Реакционный узел может представлять собой проточную кювету (об ограничениях, накладываемых такой конструкцией на пользовательские характеристики прибора), или термостати-руемую платформу с реакционными пробирками

или планшетами, которые в свою очередь бывают одноразовые или многоразовые. Использование одноразовых реакционных пробирок в отечественной лабораторной практике является весьма неэкономичным, а на реакцию, протекающую в многоразовых пробирках (планшетах), значительное влияние оказывает качество их промывки (некоторые системы оснащены автоматическими моющими узлами, некоторые требуют внешнего моющего устройства или ручной обработки) и соответствие длительности их использования регламентированному сроку эксплуатации. Любые нарушения на этом этапе могут приводить к нарушению химизма протекающих в блоке процессов и, следовательно, существенно искажать результаты. Поэтому в некоторых современных системах в качестве реакционного блока используется многоразовый реакционный ротор, состоящий из определенного количества кювет из прочного материала и не требующий ручной промывки или дополнительной просушки (все операции осуществляет сам анализатор).

Определенное значение для удобства пользователя и качества получаемых результатов имеют также конструкция охлаждающей системы (при ее наличии), количество дозаторов (желательно наличие независимых дозаторов для проб и реагентов, во избежание загрязнения иглы реагентов белковым материалом из проб больного) и еще целый ряд аспектов, но основное влияние оказывают именно описанные выше параметры.

Экономичность эксплуатации прибора и реагентов повышается по мере уменьшения объемов проб и реагентов, вносимых в кюветы. Для наиболее адекватного использования реагентов немалое значение имеет не только количество потребляемого реагента, но пошаговость его дозирования.

Все реакции имеют свой регламент, обусловленный оптимальным соотношением вступающих в реакцию компонентов, поэтому чем мельче шаг дозирования (как пробы, так и реагента), тем с большей вероятностью можно выдержать точный регламент реакции на малых объемах. Более того, при одинаковой возможной загрузке прибора (например, от 300 мкл реагента на анализ) более экономичной является такая конструкция дозатора, при которой можно установить шаг в 1 мкл, а не в 5 или 10 мкл для реагента, и 0,5–0,7 мкл, а не 1–1,5 мкл для пробы, так как это оставляет пользователю возможность работы с дробными объемами и не вынуждает его увеличивать загрузку реагента, например до 400 мкл, только потому, что невозможно изменить дозирование пробы с 4 на 4,5 мкл.

Таким образом, для оптимального выбора автоматического анализатора необходимо оценивать не только его аналитические возможности и математическое обеспечение, но и конструкцию основных узлов, оказывающую немалое влияние как на риск возникновения системных и случайных ошибок, так и на экономичность расхода реагентов.

Для адекватного выбора анализатора существенное значение имеет не только его производительность и «интеллектуальность», но и соответствие его нуждам конкретной лаборатории и конкретного лечебного учреждения. Во-первых, необходимо определить предполагаемую загрузку прибора (поток пациентов). Во-вторых – учесть возможности штатного расписания и квалификацию персонала. В-третьих – определить, какие именно тесты и в каком количестве предполагается проводить. С этой целью мы предлагаем следующие таблицы выбора (см. табл. 2, 3).

Таким

образом, полуавтоматический биохимический анализатор может быть оптимально использован при незначительном потоке пациентов или в случае проведения многочисленных анализов одного или нескольких сходных параметров.

Полностью автоматизированная система необходима при потоке более 10 пациентов в день, в особенности – при широком профиле назначаемых тестов, или при проведении тестов, требующих дополнительного обсчета и верификации результатов.

Аппараты для гематологического анализа

Существуют две методики подсчета форменных элементов крови: рутинный с использованием камеры Горяева и автоматизированный с использованием автоматических счетчиков и анализаторов.

Подсчет в счетной камере. В данном случае подсчет форменных элементов крови проводят под микроскопом в строго определенном количестве квадратов камеры Горяева. Затем пересчитывают число форменных элементов на 1 мкл и 1 л крови с учетом объема квадратов и разведения крови.

Для подсчета эритроцитов берут 0,02 мл крови, предварительно разведенной в 200 раз в 4,0 мл изотонического раствора натрия хлорида.

Счетная камера представляет собой толстую стеклянную пластину, с расположенным в центре углублением, равным 0,1 мм. На дне камеры нанесены 2 сетки Горяева, разграниченные поперечной канавкой. Сбоку от сеток расположены стеклянные прямоугольные пластины, к которым притирается шлифованное покровное стекло.

Каждая сетка Горяева состоит из 225 больших квадратов, 25 из которых разделены еще на 16 малых квадратов каждый. Сторона большого квадрата равна 0,2 мм, сторона малого квадрата – 0,05 мм. Соответственно площадь большого квадрата составляет 0,04 мм ², малого квадрата – 0,0025 мм ². Если учитывать глубину камеры, равную 0,1 мм, то объем одного малого квадрата сетки Горяева составит 2,5 х 10 ⁴мкл (см. рис. 6).

Рис. 6. Сетка Горяева для подсчета форменных элементов

Перед заполнением кровью счетную камеру и покровное стекло необходимо тщательно протереть и высушить. Большими пальцами покровное стекло плотно прижимают к боковым пластинам камеры и слегка передвигают его вверх и вниз до тех пор, пока не появятся радужные полосы («ньютоновые кольца»). Только при соблюдении этих условий достигается должный объем камеры.

Перед тем как заполнить камеру взвесью крови в изотоническом растворе необходимо содержимое пробирки несколько раз встряхнуть. Пипеткой набирают небольшой объем взвеси крови и выпускают несколько капель на фильтровальную бумагу. После чего переносят каплю разведенной крови на край покровного стекла, следя за тем, чтобы кровь равномерно заполняла всю поверхность камеры с сеткой, не затекая в боковые бороздки. Если это случится, то излишки крови необходимо удалить фильтровальной бумагой.

Подсчет эритроцитов проводят при малом увеличении микроскопа.

Эритроциты подсчитывают в 5 расположенных по диагонали сетки квадратах, которые в свою очередь разделены на малые, то есть подсчет ведется в 80 малых квадратах. Для этого под микроскопом находят верхний левый большой квадрат сетки (разделенный на 16 малых) и начинают подсчитывать число эритроцитов с него. При этом целесообразно придерживаться определенной последовательности подсчета эритроцитов: передвигаться из одного малого квадрата в другой по горизонтали, например один ряд – справа налево, другой ряд – слева направо и т. д., как показано на рисунке.